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Polyethylenimine Linear(PEI) MW25000
线性聚乙烯亚胺PEI MW25000
产品信息:
产品性质:
中文名: |
线性聚乙烯亚胺PEI MW25000 |
英文名: |
Polyethylenimine Linear(PEI) MW25000 |
CAS#: |
9002-98-6,26913-06-4 |
分子式: |
(CH2CH2NH)n |
分子量 |
25000 |
规格: |
100mg 1g 5g |
熔点: |
73-75º |
溶于: |
热水,低pH冷水,甲醇和乙醇。不溶于:苯,乙醚和丙酮 |
外观: |
白色粉末(比偏黄色粉末纯度高,有更好的转染效果) |
处理: |
手套和通风橱 |
分子量: |
25KD |
储存: |
PEI内含自由氨基,建议开封后4℃干燥保存,减缓氧化过程。 |
配置:
1:称取100mg线性聚乙烯亚胺,加新鲜的细胞级别的水90ml,加盐酸至PH=3左右, 加热至80℃左右搅拌过夜溶解PEI,
2:用氢氧化钠溶液调整pH值至7.0 ,定容至100ml,用0.22um的滤器过滤,分装后储存于4℃,保质期可以达到12个月。
转染操作流程(稳定转染方法)
1. 接种细胞: 转染前一天,用胶原酶(WORTHINGTONG公司LS004196)消化细胞并计数(不建议用胰酶)。调整细胞浓度,将细胞铺入细胞培养的器皿,每个孔置入的细胞量应能使转染时细胞汇合度达到70~80%。
2. 准备 DNA-PEI 复合物:DNA、PEI 试剂和稀释剂在进行以下步骤前需先使其升至室温。依据表1 所示,用 Opti-MEM ITM(Invitrogen)或其他适合的无蛋白培养基稀释适量 DNA。用同样的培养基稀释 PEI 试剂。每1 μg DNA 需用 1-5 μL线性PEI转染试剂(这个需要客户自行摸索配比,每一批转染试剂和每一批DNA比例可能会稍有不同)。一边轻轻涡旋装有DNA 溶液的试管,一边将稀释的线性PEI转染试剂滴加至试管中(注意:请勿颠倒添加顺序)。充分混匀后,室温静置10~25 min 以形成 DNA-PEI复合物。当溶液体积较大时,请用圆底聚丙烯管,例如NEST 5 mL /14 mL 离心管。
3. 转染细胞: 直接向每个孔中加入 DNA-PEI复合物并轻轻涡旋培养板/培养皿。在无血清条件下转染时,去除生长培养基,替换成无血清培养基,然后滴DNA-PEI复合物。转染3 h 后,添加½体积的包含 30%血清的生长培养基。
4. 孵育细胞和分析结果: 在 CO2培养箱中 37℃下孵育细胞至可以分析检测。转染后最快7 h 即可检测到转入基因的表达。
5.转染24 h 后,将细胞传代至新鲜的生长培养基中(将细胞稀释 10 倍 以上),在 CO2培养箱中 37℃孵育过夜。第二天加入与转染抗性基因相匹配的筛选药物。约1~2 周可 筛选到耐药性克隆,在这期间需经常更换含筛选药物的生长培养基。
特别提醒:
1 .PEI 25K含有4-11%的残留丙酰基,这可能阻碍聚合物主链与DNA的有效结合,所以批间转染效率可能会有比较大的差异,建议一个批次可以多购买,PEI 25K稳定性在室温干燥避光下可稳定保存10年以上(虽然有效期标注只有18个月左右)。
2. 对于某些类型的细胞如 HEK-293、HEK293T、NIH/3T3 和 COS 细胞,在转染前两天铺板,可显著提高转入基因的表达水平。如果选择转染前两天铺板,可适当降低铺板密度,以确保转染时细胞的汇合度仍为70~80%。
3. 对于接触抑制敏感的细胞,可适当降低铺板密度。
4. 即使在有蛋白(如 10%的血清)存在的情况下,DNA-PEI复合物仍能转染细胞,但是DNA-PEI复合物必须在无蛋白存在的条件下形成。我们推荐使用Opti-MEM ITM 培养基以达到最佳转染效率。其他的无蛋白培养基则需测试与线性PEI转染试剂的兼容性。
5. 对大多数细胞来而言,每 1 μg DNA 使用 3.0 μL PEI转染试剂都能获得较高转染效率。使用者也可尝试每1 μg DNA 使用 1~4 μL 体积线性PEI。
l Polyethylenimine, Linear (MW 25,000)为BIOHUB公司生产的化合物产品,每批产品出厂前都经过严格的检测,保证每批产品都100%合格、稳定且高品质,但由于作为转染试剂使用过程中有很多实验室因素(配置方法,PH,水纯度,称量的准度,dna RNA纯度,细胞状态,细胞品系…)造成溶解出现问题或者转染效率出现差异,所以厂家只受理该产品纯度,分子量及重量缺失破损等相关投诉,针对极个别客户溶解问题和转染效率问题我们只能友善解决,所以不能保证您能获得满意答复,对于产品产品转染效率不高,转染批间有差异,转染不了等问题,不作为评价我们售后工作的依据。
转染操作流程:(瞬时转染方法)
1. 接种细胞: 转染前一天,用胶原酶(WORTHINGTONG公司LS004196)消化细胞并计数(不建议用胰酶)。调整细胞浓度,将细胞铺入细胞培养的器皿,每个孔置入的细胞量应能使转染时细胞汇合度达到70~80%。
2. 准备 DNA-PEI 复合物:DNA、PEI 试剂和稀释剂在进行以下步骤前需先使其升至室温。,用Opti-MEM ITM(Invitrogen)或其他适合的无蛋白培养基稀释适量 DNA。用同样的培养基稀释 PEI 试剂。每1 μg DNA 需用 1-5 μL线性PEI转染试剂。一边轻轻涡旋装有DNA 溶液 的试管,一边将稀释的线性PEI转染试剂滴加至试管中(注意:请勿颠倒添加顺序)。充分混匀后,室温静置10~25 min 以形成 DNA-PEI复合物。当溶液体积较大时,请用圆底聚丙烯管,例如NEST 5 mL /14 mL 离心管。
3. 转染细胞: 直接向每个孔中加入 DNA-PEI复合物并轻轻涡旋培养板/培养皿。在无血清条件下转染时,去除生长培养基,替换成无血清培养基,然后滴DNA-PEI复合物。转染3 h 后,添加½体积的包含 30%血清的生长培养基。
4. 孵育细胞和分析结果: 在 CO2培养箱中 37℃下孵育细胞至可以分析检测。转染后最快7 h 即可检测到转入基因的表达。 请自行确定最适合检测时间。
转染效果参考:
细胞种类 |
中文名称 |
PEI 转染效率 |
HEK293 |
人胚肾细胞 |
90%-95% |
293-T |
人胚肾细胞 |
90%-95% |
CHO-K1 |
仓鼠卵巢细胞 |
80%-90% |
U251 |
人源神经胶质瘤细胞 |
80%-90% |
Hela |
人源宫颈癌细胞 |
70%-80% |
COS7 |
猴SV40转化肾细胞 |
70%-80% |
HepG2 |
人源肝癌细胞 |
70%-80% |
NIH/3T3 |
小鼠胚胎成纤维细胞 |
60%-70% |
胶质瘤干细胞 |
人源胶质瘤干细胞 |
60%-70% |
Patu8988 |
人源胰腺癌细胞 |
60%-70% |
U2OS |
人源骨肉瘤细胞 |
60%-70%
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